

细胞培养
多发性骨髓瘤细胞系RPMI8226细胞来源于ATCC,由第四军医大学病理学教研室惠赠。细胞培养于含100 ml/L灭活胎牛血清的RPMI 1640培养液中,置5% CO2、饱和湿度、37℃培养箱中悬浮培养,2-3天传代1次,实验用细胞处于指数生长期。
黏附实验
用无菌过滤的TSM buffer(20 mmol/L Tris-HCl,150 mmol/L NaCl,1 mmol/L CaCl2,2 mmol/L MgCl2,pH 8.0 )[2]分别配制50 μg/ml的FN及1% BSA,每孔50 μl包被96 孔板,4℃过夜,用 1% BSA封闭2小时。实验分为4组:①FN组:单纯用FN (50 μg/ml)包被;②对照组(BSA组):单纯用1% BSA包被;③STI571+FN组;④STI571+BSA组。RPMI8226细胞经无血清RPMI 1640培养12小时,并以20 μmol/L 浓度的STI571(行细胞毒预实验测得)预孵育2小时后,按2.0×104细胞/孔,种入96孔板,每组平行3孔。37℃、5% CO2分别培养1、6、12小时(期间不去除STI571)。用RPMI 1640 培养液洗板3次,70%甲醇固定10分钟,洗板晾干。0.02%结晶紫染色10分钟[1],PBS 洗去多余染料,再以0.2% Triton X-100溶解细胞,酶联免疫仪上测定各孔570 nm OD值,以含2.0×104细胞/孔为总OD值(100%)。细胞黏附率(%) =实验组OD值/总OD值×100%。
MTT检测
实验分4组,每组设3个复孔:①FN+Adr组;②BSA+Adr组;③STI571+Adr+FN组;④STI571+Adr+BSA组。FN包被及STI571处理同前。取指数生长期RPMI8226细胞按1.0×104细胞/孔种入96孔板,黏附12小时,每组分别加入以下浓度Adr:0.25、0.5、1.0、2.0、3.0、4.0 μmol/L,作用1小时,离心弃上清,加完全RPMI 1640液培养24小时后,加入MTT溶液(5 mg/ml)10 μl,37℃孵育4小时,每孔加入100 μl 10% SDS(含0.01 N HCl),充分溶解结晶物[3],570 nm波长测定各孔OD值,实验重复3次,取平均值。生长抑制率(%)=(1-试验组A值/对照组A值)×100%。
RT-PCR检测
取指数生长期细胞分为20 μmol/L STI571处理组与空白对照组,1×106个细胞培养14小时后,采用TRIzoL试剂提取总RNA。RNA反转录按试剂盒说明书进行。将反转录产物cDNA于95℃变性5分钟,开始PCR的热循环:94℃变性40秒,51℃退火40秒,72℃延伸40秒,共28个循环,最后一个循环72℃延伸10分钟,4℃保存。Rac1及GAPDH引物设计参照文献[4]。Rac1上游引物为5′-AGG AAG AGA AAA TGC CTG-3′,下游引物为5′-AGC AAA GCG TAC AAA GGT-3′,产物长度为80 bp;GAPDH上游引物为5′-TCG GAG TCA ACG GAT TTG GTC GTA-3′,下游引物为5′-TGG CAT GGA CTG TGG TCA TGA GTC-3′,产物长度为525 bp。PCR产物经2%琼脂糖凝胶电泳后,用凝胶成像系统进行灰度值扫描,并以软件Genetools分析,以目的条带与内参照条带的比值(Rac1/GAPDH)代表目的基因mRNA相对水平。
统计学分析
应用SPSS 10.0处理数据,行T-test分析。 结果
STI571对RPMI8226细胞黏附的抑制作用
随着时间延长,RPMI8226细胞与FN的黏附率逐渐上升,1、6、12小时黏附率分别为(43.71±2.18)%、(55.63±1.56)%、(63.42±2.46)%;20 μmol/L STI571处理组1、6、12小时后黏附率分别降为(15.12±1.04)%、(17.58±1.32)%、(17.24±1.59)%;与对照组相比相差显著(P<0.05),表明STI571能显著降低RPMI8226细胞与FN的黏附(图1)。
STI571逆转RPMI8226细胞CAM-DR
经Adr作用后,BSA对照组RPMI8226细胞凋亡,并有良好的浓度依赖关系,其IC50为[(0.78±0.03)μmol/L];靶细胞与FN黏附后Adr诱导的细胞凋亡明显减弱,其IC50[(1.46±0.04)μmol/L]显著高于BSA组(P<0.05),表明靶细胞黏附能提高其耐受Adr细胞毒作用,即产生了细胞耐药;而FN联合STI571处理组IC50[(0.81±0.05)μmol/L],明显低于FN组(P<0.05),说明STI571能逆转骨髓瘤细胞因黏附介导的耐药;BSA联合STI571组IC50 [(0.74±0.02)μmol/L]与BSA组[(0.78±0.03) μmol/L]相比无显著性差异(P>0.05),说明STI571下调靶细胞IC50作用并非是由于STI571与Adr的协同作用所引起的(图2)。
STI571下调RPMI8226细胞Rac1 mRNA表达
Rac1 mRNA在RPMI8226细胞中高表达,其RP-PCR产物相对灰度值为1.65±0.15 (lane 1),20 μmol/L STI571处理瘤细胞14小时后灰度值降为0.81±0.18(lane 2),表明STI571能够下调靶细胞Rac1 mRNA 表达(图3)。
讨论
Abl属于非受体型蛋白酪氨酸激酶家族成员,大部分定位于核内,少部分在胞浆。其功能因Abl在细胞内定位不同而不同,核内Abl主要涉及细胞周期、凋亡等过程,而胞浆Abl则参与细胞黏附、细胞骨架重构调控。细胞功能状态影响Abl定位及生物学活性。例如,成纤维细胞和FN黏附结合后,Abl激酶活性可上升1.9-6.8倍[5,6],并能快速从核内到胞浆,结合到纤维状肌动蛋白(filament actin,F-actin),促使F-actin聚合及粘着斑(focal adhesion)形成[7,8]。这表明Abl激酶在细胞黏附过程中发挥着重要作用。
鉴于不同类型细胞的黏附过程可能具有某些共同的生物学特征,我们推测Abl激酶也可能参与MM细胞的黏附调控过程。2002年De-Vos等[9]采用寡核苷酸阵列分析技术证实,Abl基因在恶性浆细胞中的表达高于正常浆细胞2.9倍。这一事实为研究Abl与MM细胞黏附间的关系提供了生化基础。那么能否用Abl酪氨酸激酶抑制剂STI571来抑制骨髓瘤细胞的黏附,从而逆转其CAM-DR?我们用FN黏附RPMI8226细胞1、6、12小时,黏附率依次递增,分别为(43.71±2.18)%、(55.63±1.56)%、(63.42±2.46)%;而对应的STI571处理组黏附率分别为(15.12±1.04)%、(17.58±1.32)%、(17.24±1.59)%;组间差异显著,说明STI571能明显抑制MM细胞的黏附,与此同时,靶细胞对阿霉素的IC50下降。这一结果表明,STI571能够部分逆转MM细胞的耐药性,也为进一步研究Abl调控F-actin聚合以及CAM-DR形成提供了初步依据。转贴于 酷文网-论文下载中心 http://www.coolwen.net